TERCERA PRÁCTICA SOBRE EL ESTUDIO DE MACROMOLÉCULAS: LA ELECTROFORESIS
Los objetivos de esta
práctica son varios; afianzar los contenidos explicados en clase sobre el estudio
de las macromoléculas realizado en la unidades estudiadas del currículo de 2º de BTO. Y conocer la técnica para realizar una electroforesis; aprender a interpretar sus resultados y conocer sus aplicaciones. Recordar que permite separar macroléculas, por su tamañao. Macromoléculas aisladas a partir de un tejido. Estudiamos la electroforesis en las propiedades de las dispersiones coloidales.
Se
valorará el rigor
científico, la
precisión y la
presentación en la elaboración del documento final.
II PRÁCTICA DE LABORATORIO SOBRE EL ESTUDIO DE MACROMOÉCULAS 2º BTO
EL MUNDO DE LOS
AMINOÁCIDOS Y LAS PROTEÍNAS
La información para realizar la práctica la encontrarás en el siguiente enlace: http://biomodel.uah.es/model3j/inicio.htm
El
objetivo de esta
práctica es el de afianzar los contenidos explicados en clase sobre el estudio
de las proteínas realizado en la unidad tres del currículo de 2º de BTO.
Se
valorará el rigor
científico, la
precisión y la
presentación en la elaboración del documento final.
INVESTIGA Y RESUELVE
1. Pincha
en el enlace “aminoácidos” y realiza una captura de pantalla del modelo
espacial de un α-aminoácido, indicado en
la imagen, el carbono α, el grupo amino, el grupo ácido y el radical. Indica la
carga de cada uno de los grupos y clasifica al aminoácido como ión.
2. Pincha
en los aminoácidos apolares y realiza una captura de pantalla de dos de ellos.
Señala sus componentes y da una breve explicación de por qué se clasifican como apolares. Los aminoácidos con radical
aromático están clasificados como apolares, realiza lo mismo con la
fenilalanina y el triptófano. Los radicales aromáticos son derivados del
benceno y éste es un compuesto apolar.
3. Realiza
lo mismo para los aminoácidos polares sin carga, indicando el por qué de su polaridad. Ten en cuenta que en esta página la treonina
está como aminoácido aromático, pero se caracteriza por tener grupos -OH, por lo que estaría metido en el grupo de
los aminoácidos polares sin carga.
4. Vuelve
a realizarlo para los aminoácidos polares con carga negativa y positiva.
5. A
continuación pincha en el enlace “péptidos”. Realiza una captura de pantalla de
un tripéptido, colorea el esqueleto, marca los planos del enlace peptídico;
indicando su posición, de los carbonos α
y los radicales.
6. Pincha
ahora en la estructura secundaria en α-hélice y realiza una captura de pantalla
de una α-hélice en la que se muestren los radicales, hacia la periferia de la
hélice y los enlaces por puentes de hidrógeno. Captura el modelo de cinta.
7. Pincha
ahora en la estructura secundaria en β-lámina o lámina plegada, realiza una
captura de pantalla de una lámina plegada formada por dos segmentos de cadenas
polipeptídicas, unidas mediante enlaces por puente de hidrógeno. Obtén la
captura de pantalla de como se representa la β-lámina en las proteínas grandes.
8. Haz
una captura de pantalla de la Lisozima en la que se vean los dominios
estructurales. Señala en que parte de la molécula hay estructura secundaría en
β-lámina y en α-hélice.
9. Por
último realiza una captura de pantalla de la hemoglobina. Una captura de la
imagen del grupo hemo, del grupo hemos unido al oxigeno molecular, una captura
de éste unido mediante enlace covalente coordinado dativo al nitrógeno de un resto
de histidina de la globina. ¿Por qué es una proteína con estructura cuaternaria?
10. Busca
información sobre Linus
Pauling.
PRÁCTICA DE LABORATORIO 2º BTO
EL MUNDO DE
LOS LÍPIDOS
MODELO DE BICAPA LÍPIDICA Y CANAL DE LA GRAMICIDINA
La información para realizar la práctica la encontrarás en el siguiente enlace:
http://biomodel.uah.es/model2/menu.htm
1. Pincha
en “MODELO DE BICAPA LÍPIDICA Y CANAL DE LA GRAMICIDINA”.
2. Lee
atentamente las instrucciones de la página y pincha en el botón “COMENZAR LA PRESENTACIÓN”.
3. Carga
el modelo de varillas de la molécula de colesterol y haz una captura de
pantalla.
4. Pincha
en fofolípidos. Estudia su composición y escribe su fórmula. A continuación
pincha en el símbolo: y observa el modelo espacial de cada uno de
los componentes de un fosfolípidos. Finalmente carga el modelo espacial
compacto de la macromoécula y haz una captura de pantalla.
5. A
continuación pincha en Bicapa Construcción. Pincha
en para que se carguen los modelos espaciales. Haz una captura de
pantalla en la que se destaquen los átomos de fósforo y de nitrógeno de 4
moléculas de fosfolípido. Carga una monocapa de 20 fosfolípidos y finalmente
consigue una bicapa de 40 fosfolípidos flanqueada de moléculas de agua. Haz una
captura de pantalla.
6. Finalmente
construye un bicapa cristalina y una bicapa fluida. Realiza una captura de
pantalla en cada caso.
En todas las capturas de pantalla
señala cada una de las partes que se observan.
Se presenta el lunes 29 de Octubre.
DIALISIS
PROTOCOLO PARA LA PRÁCTICA SOBRE EL PROCESO DE DIÁLISIS
DIALISIS |
Material de estudio
- Dispersión de ClNa al 1% y albúmina comercial.
- Dispersión de ClNa al 1%. y clara de huevo.
Reactivos químicos
-Disolución de NAOH
al 20%.
-Disolución de Sulfato de cobre al 1%.
-Disolución de Nitrato de Plata al 1%.
Material de trabajo
-Vasos de precipitados.
-Pipetas.
-Cuentagotas.
-Fuente de vidrio.
-Membrana semipermeable especial, en forma de tubo o cinta
hueca.
-Tubos de ensayo.
Procedimientos
-Se introduce la membrana
semipermeable en agua durante 24 horas.
-Cuando se vaya a utilizar, hacer
un nudo en uno de los extremos e introducir en ella una disolución de albúmina
de huevo, que se puede conseguir a partir de clara de huevo, en 200 cc. de NaCl
al 1%. Anudar en otro extremo e introducirlo en agua.
-Comprobar, pasados uno o dos
días, que se ha producido la diálisis. Para comprobar la presencia de NaCl, se han de tomar 2 cc de disolución, a
la que se han se añadir unas gotas de AgNO3 al 1%. Si aparece un
precipitado blando es que hay Na.
Para comprobar la presencia de albúmina,
hay que realizar la reacción de Biuret.
Hay que tomar 2 cc de disolución, se añaden 2 cc de NAOH al 20% y luego una
gotas de una disolución de Sulfato de cobre al 1%. Si aparece color violáceo es
que hay albúmina.
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